Metody wykrywania funkcji odpornościowych zwierząt

Metody badań in vitro pod kątem reakcji alergicznych na późne włosy{{0}Włosy Testy skórne i wywoływanie alergii kontaktowej to dwie popularne metody wykrywania reakcji alergicznych na późne włosy-(DTH).

W testach skórnych wywoływano-reakcję na antygeny, które spowodowały nadwrażliwość pacjenta, a alergia kontaktowa polegała na badaniu zdolności biorcy do bycia wrażliwym na substancje, które nigdy nie były narażone.. 1. Test skórny z diagnozą testu skórnego DTH, powszechnie stosowane antygeny to pochodne czystego białka bakterii gruźlicy (PPD), wirus świnki, kandydadeina itp., w testach na ludziach wstrzyknięcie przez skórę przedramienia niewielkiej ilości rozpuszczalnego antygen, 24 do 48 małych, zmierzyć wielkość czerwonych i spuchniętych twardych sęków, średnicę twardego sęka większą niż 10 mm uważa się za dodatnią. Pokazuje, że pacjent ma pewien stopień odporności komórkowej na patogen, jeśli test skórny nie daje odpowiedzi, może zastosować powtórzony test w większym stężeniu antygenu, jeśli nadal brak odpowiedzi jest negatywny, należy wykluczyć błąd techniczny testu skórnego, może być również, że pacjent nigdy nie był narażony na kontakt z tym antygenem, może to być również spowodowane niedoborem funkcji odporności komórkowej lub niedoborem funkcji odporności komórkowej,

lub nie-reaktywny z powodu ciężkich infekcji (odra, przewlekła rozlana gruźlica). 2. Alergie kontaktowe często dotyczą związków o niskiej masie cząsteczkowej, takich jak alergia kontaktowa wywołana dinitrolem i chlorobenzenem (DNCB). Związki wiążą się z białkami skóry, wywołując reakcje DTH. W testach na zwierzętach wynik testu na skórze wydaje się pozytywny, jeżeli po 7–10 dniach stymulacji od pierwszego nałożenia DNCB na skórę wynik ten wydaje się pozytywny.

Ten eksperyment nie jest już używany przez ludzi.

Metoda wykrywania odporności komórkowej in vitro Wykrywanie liczby i funkcji limfocytów in vitro, łatwiejsze pobieranie próbek krwi, przede wszystkim konieczność izolacji lub oczyszczenia limfocytów, zazwyczaj przy użyciu glutalizo{0}}glutamyny panfotonowej z proporcją 1,077 limfocytów w płynie stratyfikacji, gdy krew nakłada się na limfocyty, wirowanie cieczy warstwowej z powodu czerwonych krwinek (1,092), polimorficznych jądrowych białych krwinek (głównie 1,090), proporcje limfocytów (1,070) są różne i oddzielone od siebie. Limfocyty i monocyty tworzą cienką warstwę na styku osocza i stratyfikacji.

Ostrożnie podziel tę cienką warstwę komórek, z których limfocyty stanowią 80%, mononukleoza 20%, limfocyty 80%, komórki B stanowią 4% do 10%, jako komórki nie-DT, nie-komórki B. ⑴ Girlanda E-: na powierzchni ludzkich komórek T znajduje się receptor SRBC (CD2), który może wiązać się z SRBC, tworząc strukturę przypominającą pierścień róży-. Zawiesina RBM i SRBC są izolowane za pomocą warstwowego płynu zmieszanego ze zbilansowaną solą fizjologiczną zawierającą surowicę, hodowane w temperaturze 37 stopni C od 5 do 10 minut, w temperaturze 4 stopni C przez noc, należy zliczyć zawiesinę komórek, limfocyty krwi obwodowej w około 70% do 80% limfocyty tworzą wieńce, czyli limfocyty T.

Obecnie tę metodę stosuje się do izolowania limfocytów T bez konieczności-zliczania limfocytów T. (2) Zliczanie limfocytów T z przeciwciałami monoklonalnymi: ludzką PBM dzieli się na trzy równe części, łączy się z komórkami wstępne-mysie przeciwciała przeciwko-ludzkiemu CD3, CD4 i CD8, a następnie drugie przeciwciało króliczej anty-mysiej IgG znakowane przez FITC stosuje się do pośredniego barwienia immunofluorescencyjnego. W wynikach badań mikroskopu fluorescencyjnego lub cytometru przepływowego, w Przeciwciała PBM cd3 barwiły komórki fluorescencyjne zwane komórkami CD3-plus lub całkowitymi komórkami T. Normalni ludzie w limfocytach T PBM stanowili od 70% do 80%. Suma komórek CD4-plus i CD8 u zdrowych ludzi powinna być zgodna z liczbą komórek CD3. Stosunek komórek CD4-plus do komórek CD8 wynosi u zdrowych ludzi około 2/1, podczas gdy u pacjentów z AIDS stosunek ten jest mniejszy niż 1,7.